ТОР 5 статей: Методические подходы к анализу финансового состояния предприятия Проблема периодизации русской литературы ХХ века. Краткая характеристика второй половины ХХ века Характеристика шлифовальных кругов и ее маркировка Служебные части речи. Предлог. Союз. Частицы КАТЕГОРИИ:
|
ТЕХНИКА БЕЗОПАСНОСТИ РАБОТЫ В УЧЕБНОЙ ЛАБОРАТОРИИ2.ПРАВИЛА РАБОТЫ С КУЛЬТУРАМИ МИКРООРГАНИЗМОВ Материалы и оборудование: бактериологическая петля, предметные и покровные стекла, пробирки, ватные пробки, спиртовка или газовая горелка.
спиртовки.
Ход работы: Все работы с микроорганизмами необходимо проводить у пламени. С питательной среды микроорганизмы берутся микробиологической петлей, которая предварительно обжигается (фламбируется) в пламени спиртовки.
Порядок работы:
Окрашенные препараты бактерий готовят в следующей последовательности. Приготовление мазка: на чистое и обезжиренное предметное стекло наносят культуру исследуемого микроорганизма, тщательно размешивают и распределяют полученную суспензию по поверхности стекла. Высушивание мазка проводят при комнатной температуре. Фиксация мазка. Цель фиксации – закрепить препарат на стекле, чтобы при окраске он не смывался, убить микробов для безопасности последующего исследования. Кроме того, мертвые клетки красятся лучше, чем живые, т.к. проницаемость их клеточной стенки увеличивается, поэтому необходимо повысить восприимчивость клеток к красителям. Выделяют физические и химические методы фиксации. Чаще всего осуществляется физический м-д – нагревание (термический м-д или фламбирование), т. е. над пламенем горелки. Хотя данный метод фиксации и является достаточно грубым, но сохраняет морфологию и отношение бактерий к красителям. Препарат проносят 2-4 раза над пламенем спиртовки мазком вверх (стекло должно нагреться до такой степени, чтобы при прикосновении к тыльной стороне ладони вызывало легкое жжение). Для более детального изучения структуры клеток используют фиксирующие растворы, предотвращающие ферментативный автолиз бактерий и стабилизирующие макромолекулы путем химического их сшивания. Наиболее часто применяют формалин, спирты, жидкость Карнуа, ацетон и др. Мазки фиксируют, помещая в раствор фиксатора или нанося на мазок. Для изучения строения бактериальной клетки фиксацию проводят химическими веществами, время воздействия которых различно. Этиловым спиртом (96%) – в течение 10-15 мин., метиловым или амиловым спиртом – 3-5 мин., жидкостью Никифорова (смесь этилового спирта и эфира поровну) – 10-15 мин., ацетоном – 5 мин., хлороформом – несколько секунд, жидкостью Карнуа (96%-ного спирта – 60 мл, хлороформа – 30 мл, ледяной уксусной кислоты – 10 мл) – в течение 10 мин. Способность клеток воспринимать различные красители отражает их тинкториальные свойства. Это определяется структурой и составом клеточной стенки. Высушенные и зафиксированные препараты окрашивают, используя простой (для изучения формы микробов) или сложный способ окраски. Чаще всего используют фуксин Циля (несколько капель наливают пипеткой на фиксированный препарат-мазок и в зависимости от толщины мазка выдерживают карболовый фуксин 10-30 сек.) или метиленовую синь Леффлера (выдерживают 3-5 мин.) Окрашивание препаратов проводится с помощью красителей, которые можно разделить на: • позитивные (метиленовый синий, фуксин) и негативные (нигрозин). Позитивными называются красители, окрашивающие микроорганизмы и другие находящиеся на стекле фиксированные объекты, Негативными - красители, заполняющие пространство, окружающее микроорганизмы, в результате чего последние становятся видимыми в виде силуэтов на фоне красителя; • кислые (эозин, конго красный) и щелочные (гематоксилин, толуидиновый синий, азур). Кислые красители связываются с веществами, имеющими щелочную реакцию (например, цитоплазматическими белками), Щелочные - связываются с базофильными (кислыми) компонентами клеток (нуклеиновыми кислотами, рибосомами). Основные цвета окрашивания могут быть следующими: красный (основной фуксин, кислый фуксин, сафранин, конго красный); фиолетовый (генциановый фиолетовый, метиловый фиолетовый, кристаллический фиолетовый); синий (метиленовый синий, толуидиновый синий, водный синий); зеленый (малахитовый зеленый, бриллиантовый зеленый).
Для изучения формы микробной клетки и некоторых ее структур препарат (мазок) из материала, содержащего исследуемый вид микроба, окрашивают. Большинство микробов быстро и хорошо окрашивается растворами анилиновых красок, некоторые виды бактерий плохо или совсем не окрашиваются этими красками. Для окраски таких видов, требуется протравливание веществами, разрыхляющими оболочку клетки. Протравливание осуществляют перед окраской препарата или в момент приготовления растворов красок. При работе с трудноокрашиваемыми микробам» препарат иногда в процессе окрашивания подогревают над пламенем горелки. Наиболее часто употребляемые краски. Фуксин основной— солянокислая соль розанилина, блестящие зеленые кристаллы, хорошо растворимые в этиловом спирте и плохо в воде; цвет раствора ярко-красный. Сафранин — буровато-красный кристаллический порошок, хорошо растворимый в спирте, плохо—в воде; цвет раствора красный. Нейтральрот (нейтральный красный)—зеленовато-черный порошок, хорошо растворимый в спирте и воде; цвет водного раствора красный, спиртового— касный со слабым буроватым оттенком. Метиленовый синий — мелкие зеленые с металлическим блеском кристаллы, хорошо растворимые в спирте и воде; цвет раствора синий. Кристаллвиолет— зеленые кристаллы, растворимые в воде и спирте; цвет раствора фиолетовый. Метилвиолет — краска с большим количеством метильных групп. Выпускается под различными обозначениями (4В, 5В, 6В). В бактериологической практике обычно применяется метилвиолет 5В или 6В — темно-синие кристаллы, хорошо растворимые в воде и спирте; цвет раствора фиолетовый. Генцианвиолет— смесь кристаллвиолета и метилвиолета, хорошо растворимая в спирте и плохо в воде; цвет раствора фиолетовый. Малахитовая и бриллиантовая зелень — блестящие ярко-зеленые или желтовато-зеленые кристаллы, хорошо растворимые в воде и спирте; раствор интенсивно желтого цвета. Фуксин кислый—зеленоватый или буровато-зеленый порошок, хорошо растворимый в воде и труднее в спирте; цвет раствора красный. Пикрин кислый — блестящие бледно-желтые кристаллы, хорошо растворимые в спирте, эфире и кипящей воде; цвет растворов интенсивно желтый. Приготовление рабочих растворов красок. Прежде чем приготовить рабочие растворы красок, часто заблаговременно из сухих красок готовят насыщенные спиртовые растворы. Для этого краску заливают 96-градусным спиртом в соотношении 1:10. При таком соотношении спирт насыщается краской (нерастворенная часть красок выпадает в осадок). С целью экономии рекомендуется брать на 100 мл спирта метиленового синего 7,0, генцианвиолета 4,8, основного фуксина 8,1 г. Для лучшего насыщения спиртовые растворы помещают в термостат и выдерживают до полного растворения красок. Из насыщенных спиртовых растворов по мере надобности готовят водные рабочие растворы. Карболовый фуксин (Циля). Для приготовления берут 10 мл насыщенного спиртового раствора основного фуксина и 100 мл 5%-ного водного раствора фенола. Второй раствор при постоянном взбалтывании постепенно приливают к первому, а не наоборот. После смешивания готовый раствор фильтруют через бумажный фильтр и хранят в тщательно укупоренной бутыли из темного стекла. Карболовый фуксин Циля можно приготовить и по следующему рецепту: 1 г основного кристаллического фуксина, 5 г кристаллического фенола, несколько капель глицерина, 10 мл 96-градусного спирта, 100 мл дистиллированной воды. Сначала фуксин и карболовую кислоту тщательно растирают в ступке, добавляя по каплям глицерин. Затем при постоянном помешивании по каплям добавляют спирт, постепенно увеличивая порции, а после этого, начиная с малых порций, добавляют воду. Приготовленный в ступке раствор выдерживают 48 ч в термостате при 37° С для полного растворения фуксина, после чего фильтруют через бумажный фильтр. Краска очень стойкая и может храниться продолжительное время; употребляется при работе с трудноокрашиваемыми микроорганизмами (споровыми формами, кислотоустойчивыми бактериями). Фуксин Прейффера. Готовят из карболового фуксина Циля путем разбавления дистиллированной водой в отношении 1:10. Раствор очень нестоек и при хранении обесцвечивается, поэтому такие растворы готовят перед употреблением в небольшом количестве. Метиленовый синий (раствор Лёффлера). Щелочной спиртово-водный раствор краски. К 30 мл насыщенного спиртового раствора метиленового синего добавляют 100 мл дистиллированной воды и 1 мл 1 % -ного водного раствора едкого кали (или едкого натра). Раствор краски может долго сохраняться; по истечении некоторого времени красит лучше, чем свежеприготовленный. Карболовый генцианвиолет. К 10 мл насыщенного спиртового раствора краски добавляют 100 мл 5%-ного водного раствора фенола. Раствор выдерживают 2—3 дня в термостате. Люголевский раствор. Не является красителем. Основная составная часть его — кристаллический йод. Раствор употребляется при окрашивании по Граму. Для приготовления раствора 1 г кристаллического йода и 2 г йодистого калия растворяют 300 мл дистиллированной воды. Иод плохо растворяется в воде, поэтому необходимо сначала в 5—10 мл воды растворить йодистый калий, затем прибавить кристаллический йод и только после полного растворения йода добавить дистиллированную воду, доводя объем до 300 мл. Раствор фильтруют и хранят в склянке оранжевого цвета в прохладном месте. Приготовленные растворы красок, как правило, фильтруют через бумажные фильтры. Чтобы убедиться, что после фильтрации в растворе нет нерастворенных частиц красок, несколько капель этого раствора наливают на чистое предметное стекло, через 2—3 мин краску смывают водой, стекло просушивают фильтровальной бумагой и просматривают под иммерсионным объективом. При наличии нерастворенных частиц, обнаруживающихся в виде отдельных глыбок, необходимо повторно профильтровать раствор красок. При отсутствии осадка в растворе предметное стекло слабо и равномерно окрашивается проверяемым красителем. Часто при бактериоскопическом исследовании употребляют смесь двух или нескольких красок (краски Романовского-— Гимза, Лейшмана и др.). Рабочие растворы красок наливают во флаконы, снабженные пипеткой с резиновым баллончиком на верхнем конце. На каждом флаконе обязательно должна быть этикетка с надписью названия краски. Флаконы с раствором красок устанавливают в гнезда специальной Деревянной колодки, находящейся на рабочем столе микробиолога.
Выделяют простые и сложные (дифференцирующие) методы окраски. Простыми методами окрашивания называют окрашивание препаратов каким-либо одним красителем. Чаще всего при этом используется фуксин, генциановый фиолетовый, метиленовый синий. В случае использования негативных красителей среда, в которой находятся микроорганизмы, становится полупрозрачной; в результате клетки, в которые краситель не проникает, выглядят как светлые частицы на равномерно окрашенном фоне. Некоторые микроорганизмы, например спирохеты, плохо выявляемые с помощью позитивных красителей, легко выявляются при окрашивании негативными красителями. Споры имеют вид преломляющих свет включений в вегетативной клетке. Техника приготовления препарата заключается в следующем. Фиксированный препарат помещают на параллельные стеклянные рейки, которые лежат над кюветой. На мазок наносят 1 % водный раствор фуксина на 1 – 2 мин или метиленового синего на 3– 5 мин. Следят за тем, чтобы во время окрашивания раствор красителя не подсыхал. После завершения окрашивания препарат промывают водой до тех пор, пока стекающая вода не станет бесцветной. Затем препарат высушивают, промокая его фильтровальной бумагой, наносят на окрашенный сухой мазок каплю иммерсионного масла и микроскопируют с иммерсионной системой. Сложные (дифференцирующие) методы окраски. Сущность метода – на мазок воздействуют несколькими красящими веществами, одно из которых называется основным (главным), другие – дополнительными (контрастными). После действия первого раствора красителя мазок в зависимости от способа окраски обесцвечивают спиртом, кислотой, щелочью, ацетоном и др. К обесцвечивающим веществам микробы относятся по-разному. Одни из них являются кислото- и спиртоустойчивыми, другие – только кислотоустойчивые, третьи – не устойчивые к этим веществам. Отношение бактерий к окраске по Граму коррелирует с рядом других признаков. Как правило, грамположительные формы бактерий отличаются от грамотрицательных химическим составом веществ оболочек и цитоплазмы, содержанием РНК и ДНК в клетке, изоэлектрическим состоянием цитоплазмы, чувствительностью к антибиотическим веществам и т. д. Отношение бактерий к окраске по Граму может изменяться в зависимости от возраста культуры, ее состояния и условий выращивания. Для определения отношения микроорганизма к окраске по Граму следует использовать молодые, лучше суточные культуры, так как микроорганизмы из старой или погибающей культуры неодинаково интенсивно красятся по Граму. Мазки, нанесенные на стекло, должны быть по возможности тонкими и ровными. При толстом мазке дифференциация его будет затруднена и грамотрицательные формы бактерий могут выглядеть грамположительными.
Окраска бактерий по Грамму Окраска положена в основу дифференциации бактерий и отражает способность клеток воспринимать и удерживать внутри клетки красящий комплекс генцианового фиолетового и иода либо терять его после обработки спиртом. Принцип окраски · у первой группы микроорганизмов при окрашивании растворами красителей трифинилметанового ряда (генцианвиолет, кристаллвиолет) в присутствии йода образуется прочное соединение, не разрушающееся при последующем обесцвечивании спиртом. При этом микробные клетки остаются окрашенными в темно-синий цвет. Грамположительные бактерии (положительно красящиеся по Грамму) окрашиваются в фиолетовый цвет. · Микробы второй группы при воздействии спиртом обесцвечиваются и воспринимают дополнительную окраску, т.е. не красятся по Граму. Грамотрицательные бактерии (отрицательно красящиеся) окрашиваются в розовый цвет (цвет дополнительной окраски – в данном случае фуксина). Различное отношение к окраске по Грамму связано с наличием в цитоплазме грамположительных бактерий значительного количества магниевой соли рибонуклеиновой кислоты, которая образует с генцианвиолетом и йодом нерастворимый в спирте комплекс. Также играет роль неодинаковая проницаемость для комплекса краситель-йод клеточной стенки и цитоплазматической мембраны в связи с различием химического состава и структуры их у этих двух групп бактерий.
Материалы и оборудование. Предметные стекла, микробиологическая петля, спиртовка, кристаллизатор с подставкой для препаратов, промывалка с водой, микроскоп, чистые суточные культуры микроорганизмов. Хорошими объектами для окраски клеток микроорганизмов по Граму служат дрожжи, Bacillus mesentericus или Bacillus subtilis (грамположительные) и кишечная палочка Escherichia coli (грамотрицательная). Выделяют грамположительные (Bacillus, Clostridium, Staphylococcus, Streptococcus, Lactobacillus, Sarcina, etc.) и грамотрицательные (Escherichia, Pseudomonas, Erwinia, Neisseria, Rickettsia, etc.) формы. Красители и реактивы для окраски по Граму: 1. Феноловый раствор генциана фиолетового, генциан фиолетовый — 1 г, спирт 96%-ный — 10 мл, фенол кристаллический — 2 г, вода дистиллированная — 100 мл. В некоторых случаях применяют спиртовой раствор генциана фиолетового: генциан фиолетовый (или кристаллический фиолетовый) — 1 г, спирт 96%-ный (ректификат) — 100 мл, глицерин — 5 мл. Бутыль со смесью ставят в термостат на 24 ч (можно и дольше), затем фильтруют. 2. Раствор Люголя (иодид калия — 2 г, иод кристаллический — 1 г, вода дистиллированная — 300 мл). Вначале готовят концентрированный раствор иодида калия в 5 мл воды, в нем растворяют иод, потом добавляют воду до 300 мл. 3. Спирт 96%-ный. 4. Фуксин Пфейфера (водный раствор карболового фуксина Циля): 1 мл карболового фуксина Циля (см. 3.2.2) и 9 мл дистиллированной воды. 5. или готовый набор реактивов для окраски по Грамму (Основной вариант).
Ход работы.
Модификации окраски по Грамму:
на которую наносят карболовый раствор генцианового фиолетового, держа стекло в слегка наклонном положении. Окрашивание проводят на протяжении 1 - 2 мин.
7. Препарат промывают водой. 8. Мазок дополнительно окрашивают на протяжении 1 - 2 мин водным раствором фуксина Пфейфера. После этой обработки грамположительные микроорганизмы приобретают темно-фиолетовый цвет, а грамотрицательные окрашиваются лишь в цвет дополнительной окраски (фуксина). Результаты окраски по Граму зависят от возраста культуры: в старых культурах мертвые клетки всегда окрашиваются грамотрицательно. Поэтому лучше использовать молодые односуточные культуры. Некоторые бактерии окрашиваются грамвариабельно, т. е. часть клеток — как грамположительные, а часть — как грамотрицательные.
Метод Грама в модификации Синева. Раствор краски карболового кристаллвиолета или генцианвиолета заменяют на бумагу, приготовленную по Синеву. На фиксированный мазок накладывают полоску фильтровальной бумаги шириной 3 см, предварительно пропитанную 1%-ным спиртовым раствором кристаллического фиолетового и высушенную. На бумагу наносят 2—3 капли дистиллированной воды, придавливают пинцетом к стеклу, чтобы она равномерно пропиталась жидкостью и хорошо прилегла к мазку, и оставляют ее на препарате 2 мин. Через 2-3 мин. Бумагу снимают пинцетом, продолжают обычную обработку р-ром Люголя, спиртом, водой и дополнительно докрашивают. Модификацию Синева широко применяют на практике. Данный метод удобен тем, что препараты при этом свободны от осадков красящего раствора, а краски расходуется меньше. Метод Грама в модификации Калины. На предметное стекло наносят небольшую каплю дистиллированной воды, помещают в нее минимальное количество клеток микроорганизмов и петлей добавляют 0,5%-ный спиртовой раствор кристаллического фиолетового. Суспензию равномерно распределяют на площади 1 см2, подсушивают и фиксируют однократным проведением над пламенем горелки. После этого препарат в течение 1 мин обрабатывают реактивом, содержащим 10 мл 5%-ного раствора фуксина Пфейфера, 10 мл. 10%-ного раствора иода, 10 мл ацетона и 70 мл 0,5%-ного раствора иодида калия. Затем препарат опускают на мгновение в 96%-ный этиловый спирт и быстро высушивают фильтровальной бумагой.
ПРОВЕДЕНИЕ ЗАНЯТИЯ Теоретические вопросы окрашивания микроорганизмов 2. Демонстрация анимации «Окраска по Граму» Не нашли, что искали? Воспользуйтесь поиском:
|